Faire une microgalerie
Dans l'Opéron n°7, j'ai présenté une microgalerie réalisée en microplaque classique (cet article est disponible en copie .jpg dans la rubrique Téléchargements/microbiologie dans le menu Infos). Il sera possible de voir ainsi les limites de grands tubes et d'envisager de sérieuses économies !
Le but poursuivi est l'introduction des microméthodes en microbiologie avant l'utilisation de microgaleries commercialisées. Les réactions utilisées ont été vues en macrométhode et sont simplement transférées en microplaque au prix de quelques adaptations (pour ADH, LDC, ODC essentiellement) et d'une économie substantielle ! Il n'est pas nécessaire d'utiliser des microplaques garanties stériles.. Un deuxième but est de tester un ensemble de souches représentatives ici des bacilles Gram négatif. tester Vibrio Aeromonas et Entérobactérales est possible. Étudier plusieurs Entérobactérales et autres bacilles Gram - devient aisé.
Voici les images réalisées en 2002 des premiers TP : Galerie bacille Gram - 2002
Composition
A1 : mettre une fraction de disque ONPG | B1 : milieu Hugh et Leifson glucosé |
A2 : milieu ADH au rouge de phénol et à pH acide | B2 : milieu Hugh et Leifson mannitolé |
A3 : milieu LDC au rouge de phénol et à pH acide | B3 : milieu Hugh et Leifson saccharosé |
A4 : milieu ODC au rouge de phénol et à pH acide | B4 : milieu Hugh et Leifson maltosé |
A5 : milieu Citrate de Simmons en surfusion | B5 : milieu Hugh et Leifson lactosé |
A6 : milieu au thiosulfate et au fer III | B6 : milieu au DNA |
A7 : milieu Urée Tryptophane | B7 : milieu nitraté |
A8 : milieu Urée Tryptophane | B8 : milieu NaCl 8 g/L |
A9 : milieu Urée Tryptophane | B9 : milieu NaCl 15 g/L |
A10 : milieu Clark et Lubs | B10 : milieu NaCl 30 g/L |
A11 : mettre une fraction de pellicule photo et 100 µL de bouillon nutritif | B11 : milieu NaCl 60 g/L |
A12 : milieu Hugh et Leifson témoin | B12 : milieu NaCl 80 g/L |