Différences
Ci-dessous, les différences entre deux révisions de la page.
| Les deux révisions précédentesRévision précédenteProchaine révision | Révision précédente | ||
| bacilles_cereus_dosage_de_la_toxine [2026/02/05 09:59] – [5. Méthodes de Détection Rapide (Kits Commerciaux)] techmicrobio | bacilles_cereus_dosage_de_la_toxine [2026/02/07 11:24] (Version actuelle) – [## 3. Détection de la bactérie vs de la toxine] techmicrobio | ||
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| Ligne 1: | Ligne 1: | ||
| ====== Dosage de la toxine émétique de Bacillus cereus ====== | ====== Dosage de la toxine émétique de Bacillus cereus ====== | ||
| - | Les données suivantes sont issues de l' | + | Les données suivantes sont issues de l' |
| - | Suite à la remarque | + | Suite aux remarques |
| ====== A. Mistral ====== | ====== A. Mistral ====== | ||
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| L’ANSES et l’EFSA considèrent la LC-MS/MS comme la méthode de référence pour les enquêtes de toxi-infections alimentaires collectives (TIAC). | L’ANSES et l’EFSA considèrent la LC-MS/MS comme la méthode de référence pour les enquêtes de toxi-infections alimentaires collectives (TIAC). | ||
| - | ====== C. BILAN ====== | + | ====== C PERPLEXYTI.ai ====== |
| - | ChapGPT semble plus précis. | + | |
| + | Les textes officiels ne fixent pas aujourd’hui de critère de sécurité sur la toxine de Bacillus cereus dans les aliments, mais encadrent B. cereus par des critères d’hygiène de procédé et des normes analytiques, | ||
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| + | ===== 1. Textes officiels (UE, France) ===== | ||
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| + | B. cereus n’est pas concerné par un critère microbiologique de sécurité dans le règlement (CE) n° 2073/ | ||
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| + | La fiche danger Bacillus cereus de l’Anses (mise à jour 2021) rappelle que la bactérie est responsable de toxi‑infections diarrhéiques et d’intoxinations émétis (céréulide), | ||
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| + | La norme NF EN ISO 7932 spécifie la méthode de dénombrement et d’identification des B. cereus présomptifs dans les aliments, base des contrôles officiels et privés. | ||
| + | |||
| + | L’Anses souligne que le nombre de B. cereus à la consommation n’est pas un indicateur suffisant du risque d’intoxination émétique, la toxine pouvant être produite lors de la croissance en amont (pH, température, | ||
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| + | |||
| + | Illustration typique : les intoxications émétis sont fréquemment liées à des plats à base de riz ou pâtes cuites, refroidis et conservés à température ambiante, permettant la germination des spores et la synthèse de céréulide. | ||
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| + | ===== 2. Données dose‑réponse issues de la recherche ===== | ||
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| + | Forme diarrhéique : | ||
| + | | ||
| + | Forme émétique (céréulide) : | ||
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| + | Des quantités de céréulide suffisantes pour induire des vomissements ont été mesurées dans des aliments où la population de B. cereus atteint ou dépasse 10⁶ UFC/ | ||
| + | |||
| + | La céréulide est un depsipeptide cyclique très thermostable, | ||
| + | | ||
| + | |||
| + | Toutes les souches du groupe B. cereus ne portent pas les gènes toxiniques, et plusieurs protéines ou complexes (entérotoxines Hbl, Nhe, CytK…) contribuent aux tableaux diarrhéiques. | ||
| + | |||
| + | Ces éléments ont servi de base scientifique à la révision de la norme de dénombrement et aux travaux ayant alimenté le règlement 2073/ | ||
| + | ===== 3. Normes et méthodes « officielles » pour la bactérie ===== | ||
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| + | Pour la surveillance de la contamination, | ||
| + | |||
| + | NF EN ISO 7932 : | ||
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| + | Approches associées en laboratoire de référence ou d’investigation : | ||
| + | |||
| + | Dénombrement sur gélose sélective, parfois complété par PCR de gènes toxiniques (ces, hbl, nhe, cytK) pour caractériser les souches; | ||
| + | |||
| + | Typage plus fin en contexte de TIAC (PFGE, MLST, WGS) dans la littérature récente. | ||
| + | | ||
| + | |||
| + | Ces méthodes ne mesurent pas la concentration de toxine dans l’aliment, | ||
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| + | ===== 4. Méthodes de détection/ | ||
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| + | ==== a) Céréulide (toxine émétique) ==== | ||
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| + | === Méthodes de référence et de recherche : | ||
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| + | Bioessais sur cellules eucaryotes ou modèles animaux (historiquement utilisés), permettant de détecter l’activité toxique mais peu adaptés à la routine (lents, peu standardisés). | ||
| + | |||
| + | === LC‑MS/MS (chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse) : | ||
| + | |||
| + | Permet la quantification directe de la céréulide dans des matrices alimentaires (riz, lait, plats cuisinés). | ||
| + | |||
| + | Des limites de détection de l’ordre de 1 ng/g d’aliment ont été rapportées, | ||
| + | |||
| + | === MALDI‑TOF MS : === | ||
| + | |||
| + | Protocoles récents permettent la détection rapide de la céréulide à partir d’un frottis de colonie de B. cereus ou directement à partir d’aliments. | ||
| + | |||
| + | Le pic d’ion potassié [M+K]⁺ de la céréulide est clairement visible à m/z ~1191; des optimisations d’extraction sans matrice ont permis un gain de sensibilité d’un facteur 1000 avec un seuil de détection autour de 30 pg/ | ||
| + | |||
| + | Ces méthodes sont aujourd’hui considérées comme des techniques de choix pour confirmer la présence de céréulide dans des investigations d’épisodes émétis et pour des applications industrielles avancées. | ||
| + | ==== b) Entérotoxines (formes diarrhéiques) ==== | ||
| + | |||
| + | |||
| + | * Tests immuno‑enzymatiques (ELISA) ciblant les complexes Hbl, Nhe, CytK sont commercialisés et largement utilisés en recherche et parfois en diagnostic vétérinaire ou contrôle qualité. | ||
| + | * PCR et qPCR de gènes codant ces toxines permettent de détecter des souches potentiellement productrices dans les aliments ou les isolats. | ||
| + | * LC‑MS/MS est également utilisée pour la détection/ | ||
| + | |||
| + | Dans un contexte de TIAC, des combinaisons « dénombrement sur gélose + PCR des gènes toxiniques + LC‑MS/MS de la toxine » sont décrites pour documenter la responsabilité d’une souche émétis, y compris dans des enquêtes de terrain (restaurants, | ||
| + | ===== 5. Pratique et techniques « éprouvées » en filière ===== | ||
| + | |||
| + | En filières industrielles et en contrôle officiel, les approches suivantes sont décrites comme robustes : | ||
| + | |||
| + | Maîtrise du danger par procédé plutôt que par dosage de toxine : | ||
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| + | Application de BPH/BPF pour limiter la survie des spores et la croissance (refroidissement rapide, stockage ≤ 3–4 °C, | ||
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| + | Intégration de // | ||
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| + | Surveillance microbiologique de routine : | ||
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| + | * Dénombrement de B. cereus selon ISO 7932 à différents stades (matières premières, fin de fabrication, | ||
| + | * Utilisation d’outils rapides (boîtes prêtes à l’emploi, kits immunologiques) comme pré‑screening, | ||
| + | |||
| + | Utilisation ciblée des méthodes toxiniques (LC‑MS/ | ||
| + | |||
| + | Principalement en laboratoire spécialisé ou en R&D pour valider la maîtrise des procédés, investiguer des cas d’intoxication ou caractériser des souches « émétiques ». | ||
| + | |||
| + | En résumé, la réglementation se concentre sur B. cereus comme indicateur d’hygiène de procédé, tandis que la recherche et certaines pratiques industrielles avancées mobilisent la LC‑MS/MS, le MALDI‑TOF et les tests immunologiques ou PCR pour détecter et quantifier la toxine céréulide et les entérotoxines. Ces techniques servent surtout à documenter le risque et à calibrer les mesures de maîtrise plutôt qu’à définir des seuils réglementaires de toxine dans les aliments. | ||
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| + | ===== Comparaison MALDI-TOF vs bioessais pour détection céréulide ===== | ||
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| + | MALDI‑TOF permet une détection physico‑chimique rapide et assez sensible de la céréulide, | ||
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| + | ==== ## Principe de chaque approche ==== | ||
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| + | - **MALDI‑TOF** : | ||
| + | - Bioessais : | ||
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| + | ==== ## Sensibilité et spécificité ==== | ||
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| + | - MALDI‑TOF : | ||
| + | - Limite de détection typique pour la céréulide standard de l’ordre de 0, | ||
| + | - Spécificité élevée lorsque l’on combine le pattern m/z et l’analyse de fragments, car on identifie la structure chimique de la toxine. [frontiersin](https:// | ||
| + | - Bioessais : | ||
| + | - Bioessai mitochondries ou HEp‑2 décrit comme « sensible, | ||
| + | - Spécificité fonctionnelle : | ||
| + | |||
| + | ==== ## Rapidité, praticité, coût ==== | ||
| + | |||
| + | - MALDI‑TOF : | ||
| + | - Préparation type « biotypage » (extraction éthanol/ | ||
| + | - Adapté aux laboratoires déjà équipés en MALDI‑TOF (clinique/ | ||
| + | - Bioessais : | ||
| + | - Nécessitent cultures cellulaires ou mitochondries isolées, incubation, parfois microscopie ou respirométrie; | ||
| + | - Coûts récurrents en matériel biologique, exigences de laboratoire de culture cellulaire, forte dépendance à l’expertise opérateur. [pmc.ncbi.nlm.nih](https:// | ||
| + | |||
| + | ==== ## Quantification et type d’information ==== | ||
| + | |||
| + | - MALDI‑TOF : | ||
| + | - Principalement qualitatif/ | ||
| + | - Donne une information chimique : | ||
| + | - Bioessais : | ||
| + | - Mesure une activité biologique globale (toxicité mitochondriale, | ||
| + | - Apport majeur pour répondre à la question : | ||
| + | |||
| + | ==== ## Limites et usages typiques ==== | ||
| + | |||
| + | - MALDI‑TOF : | ||
| + | - Ne donne pas d’information sur la toxicité fonctionnelle dans un système biologique (stabilité, | ||
| + | - Très adapté au screening rapide de souches émétiques vs non émétiques et à la confirmation de céréulide dans des colonies ou extraits alimentaires. [frontiersin](https:// | ||
| + | - Bioessais : | ||
| + | - Standardisation difficile entre laboratoires (lignées cellulaires, | ||
| + | - Plutôt réservés à la recherche et à quelques laboratoires de référence, | ||
| + | |||
| + | ==== ### En résumé opérationnel ==== | ||
| + | |||
| + | - Pour un laboratoire équipé en spectrométrie de masse cherchant un outil de routine sur les souches ou les aliments : | ||
| + | - Pour des études mécanistiques ou la confirmation de la toxicité mitochondriale (corrélation dose‑effet, | ||
| + | ======= D. Consensus ====== | ||
| + | # **Détection de la toxine émétique de Bacillus cereus (céréulide) dans les aliments : normes et méthodes** | ||
| + | |||
| + | **En pratique, les textes officiels s’appuient sur des méthodes LC‑MS/MS normalisées (notamment ISO 18465) pour **quantifier le céréulide** dans les aliments, complétées par des PCR sur les souches et quelques méthodes rapides comme le MALDI‑TOF.** | ||
| + | |||
| + | ===== ## 1. Textes officiels et normes ===== | ||
| + | |||
| + | - Une méthode de référence européenne/ | ||
| + | - Cette norme est explicitement citée comme **méthode standard** pour les produits destinés à la consommation humaine | ||
| + | - La validation inter‑laboratoires montre une **très bonne répétabilité et reproductibilité** (RSD généralement <10 %, recouvrements ≈ 95–100 %) (Veld et al., 2019; Masquelier et al., 2023; Delbrassinne et al., 2012; Bauer et al., 2010). | ||
| + | |||
| + | ===== ## 2. Panorama des méthodes éprouvées ===== | ||
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| + | ==== ### Méthodes chimiques / instrumentales ==== | ||
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| + | | Objectif | Méthode clé | Sensibilité / atouts | Citations | | ||
| + | |---------|-------------|----------------------|-----------| | ||
| + | | Quantification de référence | LC‑MS/MS (SIDA, étalon ^13C‑céréulide) | LOQ ~0,3–1 µg/kg ; haute justesse | (Veld et al., 2019; Masquelier et al., 2023; Delbrassinne et al., 2012; Marxen et al., 2015; Bauer et al., 2010; Rønning et al., 2015)| | ||
| + | | Variantes rapides matrices ciblées (riz, pâtes…) | LC‑MS/MS + QuEChERS ou extraction simplifiée | LOQ ~0,5–2 µg/kg, procédures simplifiées | (Koike et al., 2024; Yamaguchi et al., 2013; Cui et al., 2023)| | ||
| + | | Détection rapide sur colonies / screening aliments | MALDI‑TOF MS (avec ou sans matrice) | Détection directe de pics m/z 1175–1191 ; LOD jusqu’à 30 pg/mL | (Ducrest et al., 2019; Koike et al., 2024; Dietrich et al., 2021; Doellinger et al., 2019)| | ||
| + | | Méthodes de labo plus simples | Chromatographie en phase inversée (RPC) couplée ou non à MS | Outil robuste, économique pour recherche | (Kalbhenn et al., 2021)| | ||
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| + | **Figure 1:** Principales méthodes validées pour doser le céréulide. | ||
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| + | ===== ## 3. Détection de la bactérie vs de la toxine ===== | ||
| + | |||
| + | - **Culture sur milieux sélectifs + dénombrement** reste la base pour les “B. cereus présomptifs”, | ||
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| + | - **PCR ciblant les gènes ces/ | ||
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| + | - Les **méthodes immunologiques/ | ||
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| + | ===== ## Conclusion ===== | ||
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| + | Les textes officiels et la pratique de laboratoire convergent : la **quantification du céréulide dans les aliments repose aujourd’hui principalement sur LC‑MS/MS normalisée (ISO 18465), avec étalon interne isotopique en référence**, | ||
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| + | _These search results were found and analyzed using Consensus, an AI-powered search engine for research. Try it at https:// | ||
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| + | ## References | ||
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| + | Meng, J., Liu, Y., Shen, X., Wang, J., Xu, Z., Ding, Y., Beier, R., Luo, L., Lei, H., & Xu, Z. (2022). Detection of emetic Bacillus cereus and the emetic toxin cereulide in food matrices: Progress and perspectives. *Trends in Food Science & Technology*. https:// | ||
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| + | Veld, P., Van Der Laak, L., Zon, M., & Biesta-Peters, | ||
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| + | Ducrest, P., Pfammatter, S., Stephan, D., Vogel, G., Thibault, P., & Schnyder, B. (2019). Rapid detection of Bacillus ionophore cereulide in food products. *Scientific Reports*, 9. https:// | ||
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| + | Ramarao, N., Tran, S., Marin, M., & Vidić, J. (2020). Advanced Methods for Detection of Bacillus cereus and Its Pathogenic Factors. *Sensors (Basel, Switzerland)*, | ||
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| + | Kalbhenn, E., Bauer, T., Stark, T., Knüpfer, M., Grass, G., & Ehling-Schulz, | ||
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| + | Masquelier, J., Segers, C., Jacobs, B., Van Nieuwenhuysen, | ||
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| + | Koike, H., Kanda, M., Monma, C., Yoshikawa, S., Hayashi, H., Matsushima, Y., Ohba, Y., Hayashi, M., Furuta, N., Okada, W., Nagano, C., Yokoyama, K., Yokoyama, T., & Sasamoto, T. (2024). Development of a simple screening method for analyzing cereulide toxin in fried rice using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. *Forensic Toxicology*, | ||
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| + | Yamaguchi, M., Kawai, T., Kitagawa, M., & Kumeda, Y. (2013). A new method for rapid and quantitative detection of the Bacillus cereus emetic toxin cereulide in food products by liquid chromatography-tandem mass spectrometry analysis.. *Food microbiology*, | ||
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| + | Delbrassinne, | ||
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| + | Dietrich, R., Jessberger, N., Ehling-Schulz, | ||
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| + | Jovanovic, J., Ornelis, V., Madder, A., & Rajković, A. (2021). Bacillus cereus food intoxication and toxicoinfection.. *Comprehensive reviews in food science and food safety*. https:// | ||
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| + | Marxen, S., Stark, T., Rütschle, A., Lücking, G., Frenzel, E., Scherer, S., Ehling-Schulz, | ||
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| + | Cui, X., Wang, L., Liu, P., Duan, J., Zhao, R., & Fan, S. (2023). [Rapid confirmation method of food poisoning caused by Bacillus cereus cereulide in rice and flour products].. *Wei sheng yan jiu = Journal of hygiene research*, 52 4, 573-578. https:// | ||
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| + | Bauer, T., Stark, T., Hofmann, T., & Ehling-Schulz, | ||
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| + | Rønning, H., Asp, T., & Granum, P. (2015). Determination and quantification of the emetic toxin cereulide from Bacillus cereus in pasta, rice and cream with liquid chromatography–tandem mass spectrometry. *Food Additives & Contaminants: | ||
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| + | Doellinger, J., Schneider, A., Stark, T., Ehling-Schulz, | ||
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| + | ====== E. BILAN ====== | ||
| + | ChapGPT semble plus précis. | ||
| Aucune technique n'est clairement commercialisée pour ce dosage. | Aucune technique n'est clairement commercialisée pour ce dosage. | ||