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| antibiogrammes [2024/10/05 14:46] – [Quelle méthode pour l'antibiogramme ?] techmicrobio | antibiogrammes [2024/10/05 15:46] (Version actuelle) – [Les bétalactamases à spectre élargi/étendu (BLSE ou ESBL)] techmicrobio |
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| Qu'en pensez-vous ? | Qu'en pensez-vous ? |
| Voici un exemple de résultat obtenu pour une bactérie urinaire malencontreusement contaminée par un Enterococcus. On remarquera l'évidence du contaminant malgré les défauts de la numérisation de l'image. | Voici un exemple de résultat obtenu pour une bactérie urinaire malencontreusement contaminée par un Enterococcus. On remarquera l'évidence du contaminant malgré les défauts de la numérisation de l'image. |
| {{::ab_ecouvillon.jpg?400|}} | {{:ab:ab_ecouvillon.jpg?400|}} |
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| ==== Résistance hétérogène de Serratia ? ==== | ==== Résistance hétérogène de Serratia ? ==== |
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| L'image ci-dessous montre de curieux phénomènes autour de AM ou AMC : de petites colonies figurent dans la zone d'inhibition. On pourrait penser à une résistance hétérogène : dans le clone existerait des individus résistants à A. | L'image ci-dessous montre de curieux phénomènes autour de AM ou AMC : de petites colonies figurent dans la zone d'inhibition. On pourrait penser à une résistance hétérogène : dans le clone existerait des individus résistants à A. Qu'en pensez-vous ? |
| Qu'en pensez-vous ? | {{:ab:ab_r_heterogene.jpg?400|}} |
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| Merci | |
| ==== Un exemple d'antibiogramme d'un mélange ==== | ==== Un exemple d'antibiogramme d'un mélange ==== |
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| Une galerie api20E réalisée sur ce qui devait être une colonie donne les résultats suivants : | Une galerie api20E réalisée sur ce qui devait être une colonie donne les résultats suivants : |
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| L'analyse montre clairement la présence d'un Proteus mirabilis probable mais avec des caractères anormaux, utilisation de nombreux glucides, ONPG, production d'Indole… Le soupçon s'installe : un Escherichia coli a du se glisser aux côtés du Proteus ! | L'analyse montre clairement la présence d'un //Proteus mirabilis// probable mais avec des caractères anormaux, utilisation de nombreux glucides, ONPG, production d'Indole… Le soupçon s'installe : un //Escherichia coli// a du se glisser aux côtés du //Proteus// ! |
| Un antibiogramme a été réalisé en même temps. | Un antibiogramme a été réalisé en même temps. |
| En voici l'image : | En voici l'image : |
| | {{:ab:ab_melange.jpg?400|}} |
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| L'antibiogramme montre clairement deux bactéries (les densités sont différentes) avec une souche | L'antibiogramme montre clairement deux bactéries (les densités sont différentes) avec une souche |
| • résistante au SXT (triméthoprime) | * résistante au SXT (triméthoprime) |
| • résistant mieux au mélange AMC (augmentin® acide clavulanique + amoxicilline) | * résistant mieux au mélange AMC (augmentin® acide clavulanique + amoxicilline) |
| • très sensible à lPM (imipénème) | * très sensible à lPM (imipénème) |
| • avec une image curieuse entre PB et CIP qu'il faudrait analyser… | * avec une image curieuse entre PB et CIP qu'il faudrait analyser… |
| Bonne lecture ! | Bonne lecture ! |
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| La souche utilisée est un //E. coli// banal. | La souche utilisée est un //E. coli// banal. |
| L'antibiotique est du Clamoxyl (amoxicilline) injectable (flacon de 1 g, solution utilisée de 256 µg/mL). Le choix de l'injectable est l'assurance d'avoir un soluté stérile et soluble… | L'antibiotique est du Clamoxyl (amoxicilline) injectable (flacon de 1 g, solution utilisée de 256 µg/mL). Le choix de l'injectable est l'assurance d'avoir un soluté stérile et soluble… |
| | {{:ab:ab_microplaque_pb.jpg?400|}} |
| Résultats : | Résultats : |
| La ligne A montre un erreur grossière | La ligne A montre un erreur grossière |
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| Quand un stagiaire se trompe, il est possible de faire faire, vu les lignes vides (la conservation de la plaque pour des tp ultérieurs n'étant pas souhaitable au vu des bactéries vivantes de la plaque…), une série de dilutions au 1/2 d'un colorant concentré pour l'entrainer aux dilutions (pour un cout nul) : | Quand un stagiaire se trompe, il est possible de faire faire, vu les lignes vides (la conservation de la plaque pour des tp ultérieurs n'étant pas souhaitable au vu des bactéries vivantes de la plaque…), une série de dilutions au 1/2 d'un colorant concentré pour l'entrainer aux dilutions (pour un cout nul) : |
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| | {{:ab:ab_microplaque_colorant.png?400|}} |
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| Bonne lecture… | Bonne lecture… |
| | ==== Les bétalactamases à spectre élargi/étendu (BLSE ou ESBL)==== |
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| | Les bétalactamases à spectre élargi/étendu, donnent des images très classiques de bouchon de champagne entre les disques de type Céphalosporine de 3e génération et un disque contenant de l'acide clavulanique. Il n'est pas facile d'expliquer de telles images… |
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| | Voici une proposition pour tenter de comprendre : |
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| | En haut, pour //E. coli// (merci à Mélanie Dufaux pour l'image), les zones où les cercles se rejoignent représentent en violet la zone où l'acide clavulanique est efficace. Ces cercles ont le même diamètre… montrant donc que l'acide clavulanique agit à la même concentration. Le positionnement pour le disque de CTX (entouré d'orange) est le même par rapport aux autres disques. |
| | En bas, le cercle rouge montre là aussi l'acide clavulanique. Le croisement des disques violet et rouge montre aussi l'action conjointe des deux molécules. |
| | On peut donc penser que c'est bien l'acide clavulanique qui est en cause et déclenche la synergie : il inhibe la BLSE permettant, dans la zone d'intersection, l'action de l'autre antibiotique (la C3G). |
| | {{:ab:blse_ecoli.jpg?400|}} |
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| | À vos critiques… |
